荷叶蜡质层处理与荷梗品质及抗氧化性
-
2019年
第39卷第1期()
JournalofHebeiUniversitNaturalScienceEdition
y
河北大学学报
(
自然科学版
)
Vol.39No.1
2019
:/
.10001565.2019.01.018
j
荷叶蜡质层处理与荷梗品质及抗氧化性
郭春延
,
张楠
,
薛晶晶
,
刘兆宁
,
魏然
,
楚建周
,
姚晓芹
()
河北大学生命科学学院
,
河北保定
071002
无打磨荷叶和荷梗的活性成分
、
营养成分和抗氧化性.实验结果表明
:
无打磨荷叶的活性成分和营养成分含
量
(
维生素C含量除外
)
显著高于打磨荷叶的活性成分和营养成分含量
,
而打磨荷叶的抗氧化性显著高于无
打磨荷叶的抗氧化性.荷梗的生物碱含量较高
,
同时抗氧化性也较强.因此
,
荷梗具有重要的开发潜能.
关键词
:
荷叶
;
荷梗
;
打磨
;
活性成分
;
抗氧化性()中图分类号
:R282文献标志码
:A文章编号
:11010607
摘要
:
为了探索荷叶蜡质层是否影响荷叶品质
,
明确荷梗的品质及其抗氧化性
,
主要研究了打磨荷叶
、
ualitiesandantioxidantactivitiesoflotusleaf
Q
waxlaertreatmentandlotus
p
etioles
y
,,,,W,,GUOChunanZHANGNanXUEJininLIUZhaoninEIRanCHUJianzhouYAOXiaoin
ygjggq
(,
H
,)
ColleeofLifeSciencesebeiUniversitBaodin71002
,
China
gyg
0
:AbstractThe
p
aermainliscussedthe
q
ualitiesandtheantioxidantactivitiesinthe
p
olishedlotus
py
d
,,
leavestheunolishedlotusleavesandthelotus
p
etiolesinordertoexlorinhetherthewaxlaeron
ppg
w
y
,
lotusleavesaffectthe
q
ualitiesoflotusleavesandtoindentifinthe
q
ualitndantioxidantactivitflo-
ygy
a
y
o
oftheunolishedlotusleavesweresinificantliherthanthatofthe
p
ioxi-
pgy
h
g
have
g
reat
p
otentialtobeutilized.
:;;;Keordslotusleaflotus
p
etioleolish
;
activeinredientsantioxidantactivit
pgyy
w
)
tus
p
ultowedthattheactiveandnutritionalinredients
(
excetforvitaminCcontent
gp
dantactivitiesofthe
p
olishedlotusleavesweresinificantliherthanthatoftheunolishedlotusleaves.
gy
h
gp
,
Lotus
p
etioleowedhihalkaloidcontentand
p
orelotus
p
etioles
gy
]
1
叶作为食用和药用资源
,
自古即有广泛应用
[
荷叶中富含生物碱
、
类黄酮
、
氨基酸
、
蛋白等活性成分和营养.
2
]
3
]
4
],成分
[具有调脂降压
、
抑菌消炎的功效[
荷梗为圆柱形
,
气味微淡
,
具有清热化湿等多重功效
[..
)))
的叶及叶柄
.荷叶
(与荷梗
(
为睡莲科植物莲
(荷lotusleaveslotus
p
etiolesNelumbonucieraGaertn.
f
植物表皮蜡质分为内外表皮蜡质2部分.内蜡质镶嵌在角质层的内部
,
外蜡质覆盖在角质层的外部.内
5
]
外表皮蜡质的作用不同
,
内蜡质主要起蒸腾屏障作用
,
外蜡质则影响植物的润湿性和自洁功能
[
荷叶表皮.
收稿日期
:20180515
);;国家自然科学基金资助项目
(河北省自然科学基金资助项目
(
河北大学大学生创新创基金项目
:31300321C2012201080
)
,:郭春延
(女
,
河北邢台人
,
河北大学在读硕士研究生
.第一作者
:1991
—)
E-mail1076568696@
q
.com
q
)业项目
(2018108
,:楚建周
(男
,
河北保定人
,
河北大学实验师
,
主要从事植物营养学研究
.通信作者
:1978
—)
E-mailcz01me@
j
,:姚晓芹
(女
,
河北邯郸人
,
河北大学教授
,
主要从事植物生理生态学研究
.1978
—)
E-mailaoxiao301@
y
第1期郭春延等
:
荷叶蜡质层处理与荷梗品质及抗氧化性107
6
]
具有无数微米级和纳米级突微粒
,
构成双重蜡质结构.李峰等
[
研究发现蜡质层是阻碍红枣烘干的关键因
7
]
素
,
破坏蜡质层可以有效缩短红枣干燥时间.杨帅等
[
研究发现蓝莓外表皮蜡质层损伤后
,
维生素和总酚含
量随储藏时间先上升后下降
,
然而花青素含量下降.荷叶表面蜡质层是否影响荷叶活性成分
、
营养成分及抗
氧化性
,
尚未有这方面的研究报道.
8
]
药用植物的根
、
茎和叶一般都可入药或制茶.甘华盛等
[
研究发现柴胡的根与茎叶均有退热作用.杜尔
9
]
逊等
[
研究发现人参茎叶的药理活性与根相似.荷花各部分均可药食两用
,
藕和莲子为食用部分
,
荷花
、
荷叶
]
10
可药用也可制茶.目前市场上有荷花茶
、
荷叶茶
,
但未见有药用或食用荷梗的研究报道.许文成等
[
从荷梗的
化学成分中鉴定出9个化合物.而对其活性成分
、
营养成分及抗氧化性鲜有报道.
此
,
对荷叶进行开发
,
物尽其用
,
具有极大的意义.因此本实验通过对荷叶表面蜡质层处理
,
探索蜡质层对荷叶品
质及抗氧化性的影响
,
希望能为炒制出高营养价值的荷叶茶提供理论参考.另外
,
本实验通过对荷叶与荷梗品质
及抗氧化性进行比较研究
,
希望能发掘荷梗食用和药用资源的开发潜能
,
丰富以荷为原料的产品种类.
荷叶不仅资源丰富而且价格低廉
,
但只有极少用于医疗和食品
,
大部分都荒废在池塘里
,
造成资源浪费.因
1材料与方法
1.1材料
将荷叶剪成长2.荷梗剪成高2017年8月中旬在河北省白洋淀采摘荷叶与荷梗.5cm宽2cm的长方形
,
将一部分荷叶表面用刀片打磨去除蜡质层
(
轻轻刮去表面蜡质层即可
,
不破坏叶内组织
)
样0.2cm的圆柱形..
品处理后放入6粉碎过筛
,
均匀混合后备用.实验中每个处理设置5个重复.5℃恒温烘箱中烘干至恒重
,
1.2仪器和试剂
,
电子天平
(
赛多利斯科学仪器北京有限公司
)
数控超声波清洗器
(
功率2
深圳市康洁
PS-40A型
,40W
,
),,电热恒温培养箱
(湖北省黄石市医疗器械厂
)
水1S-RD-37520
,
OsterodemadeinGermanWMK-02型
,y
浴锅
(
金坛市晶波实验仪器厂
)
等.
1.3参数测定
、
乙醇
(
分析纯
)
硫酸
、
盐酸
、
草酸
、
蒽酮
、
荷叶碱
、
芸香叶苷等.
,,
洗净电器有限公司
)
紫外分光光度计
(
上海舜宇恒平科学仪器有限公司
)
低温离心机
(722型
,Multifue
g
1.3.1黄酮含量的测定
黄酮含量的测定是在何书美等
[]
11
,/乙醇5m
放置过夜
(
超声
0.
过滤并定容至
2
取混合液
5mL
,
12h
)
5h
,
5mL
,
L加0.11molL的三氯化铝),醋酸钠缓冲溶液4m
再次定容至
2
混合均匀后放置
0.
于分光光度计
48mL和醋酸-L
(
H5.55mL
,
5h
,
15
p
,/的测定方法基础上加以适当的修改
:
取样品0.
加入
8.2
g
87molL的
1.3.2生物碱含量的测定
nm波长下测定吸光度值.
)、,),/,浓氨水1m
摇床振荡
0.
氯仿
5m
摇床振荡
5m
取混合
L
(
5hL
(
in35℃热浸1h5000rmin离心5min
,草酚蓝溶液1m
摇晃
1m
放置
1h
,
取氯仿层作为样品供试液
.以氯仿为空白
,
于分光光度计4L
,
in16nm波
]
12
生物碱含量的测定是在王蕾等
[
的测定方法基础上加以适当的修改
:
取样品0.依次加2
g放入试管中
,
)、/液2m补加氯仿8m
加柠檬酸柠檬酸钠缓冲液1L置于分液漏斗中
,L
,
-0mL
(
H5.42mmolL的溴麝香p
长下测定吸光度值.
1.3.3游离氨基酸含量的测定
游离氨基酸浓度的测定采用茚三酮比法并稍作修改
[]
13
/,
取出冷却待红褪去呈现蓝紫时
,
用
mL
、
0.06molL抗坏血酸0.1mL振荡均匀后沸水浴15min
/
于分光光度计
510.64molL的乙醇添加至20mL
,
70nm波长下测定吸光度值.
,/,作为提取剂
,
浸泡过夜
(超声
0.
取上清液
2m12h
)
5h
,
8000rmin离心5minL加入水合茚三酮溶液3
:,/
称取样品
0.
加
1.2
g
75molL的醋酸8mL
108河北大学学报
(
自然科学版
)
第39卷
1.3.4总维生素C含量的测定
总维生素C含量用2
,二硝基苯肼比法测定4-[]
14
/,/上清液移至刻度管
(用
0.并取稀释过的提0.5h
,
8000rmin离心5min.25mL
)
11molL草酸添加至刻度.
,/取液1
氧化处理
,
过滤并取
5m0mL加入活性炭0.2
g振荡1minL加入0.26molL硫脲5mL振荡混匀.
/),取该混合液4m二硝基苯肼1m
取出后放入冰
L加入0.1molL2
,
4-L混合均匀后放于水浴锅
(37°C
,
3h
光度值.
/水中
,
边振荡边滴加1取出后室温放置0.
于分光光度计
55.86molL的硫酸5mL.5h
,
00nm波长下测定吸
:,/
取样品
0.
加
0.
超声
2
g
11molL草酸8mL
,
1.3.5可溶性糖含量的测定
,/,
取出冷却后倒入离心管
,
将上清液移至刻度管
,
残渣加蒸馏水
10min8000rmin离心15min5mL再次提取/、合并
,
上清液用蒸馏水定容到2取提取液0
蒸馏水
1m0mL..1mL加入乙醇0.9mL
(
14.2molL
)
L及蒽酮
[
5
],可溶性糖含量的测定采用M的研究方法并作适当修改
:
取样品0
加蒸馏水
5m
沸水浴
achadol等
1.2
g
L
,
1.3.6蛋白含量的测定
,
振荡均匀沸水浴
(
于分光光度计
65mL
,
100℃
)
10min25nm波长下测定吸光度值.
1.3.7DPPH自由基清除活性的测定
于分光光度计52min后
,95nm波长下测定吸光度值.
)/,酸缓冲液5m
作为提取剂
,
取上清液
0.
反应
L
(
H7.44000rmin离心15min1mL加考马斯亮蓝5mL
,
p
[
6
]
蛋白含量的测定采用的是B创建的方法并作适当的修改
:
称取样品0.加入磷radford12
g放入试管中
,
[
7
]
的研究方法并作少量修改
:
取样品液2m
加
DPPH自由基清除活性的测定是采用Mohsen等
1L
,
/
室温放置
0.0.04
g
L的DPPH2mL
,
5h
,
于分光光度计
517nm波长下测定吸光度值.
/
DPPH清除率=
(A
0-A1+A2)A
2×100%
,
1.3.8超氧阴离子自由基清除活性的测定
采用Chen等
[
18
]
A
0:
2mL无水乙醇+2mLDPPH溶液的吸光度值
;A
1:
2mL样品溶液+2mLDPPH溶液的吸光度
值
;A
2:
2mL样品溶液+2mL无水乙醇的吸光度值.
/的研究方法并作少量修改测定超氧阴离子自由基清除活性
:
首先将0.05molL的
结果表示为原始管的吸光度值
(1mL的蒸馏水代替样品液
,A
2)
.
)/,
样品液
1m
然后将三
Tris-HCL缓冲液
(H8.24mL
、
L
、
0.2mmolL邻苯三酚1mL水浴
(25℃
)
20min
p
,者混匀水浴
(用
2滴浓HC于分光光度计3用25℃
)
4minl结束反应
,25nm波长下测定吸光度值
(A
1)
.
-/
OA
2-A1)A
2×100%.2
清除率=
(
(/;A
1
参比
:4mL缓冲液+1mL样品液+1mLHCl0.05molL
)A
2
参比
:4mL缓冲液+1mL蒸馏(/
L
)水+1mLHCl0.05mol.
1.3.9羟基自由基清除活性的测定
采用You等
[]
19
)后水浴
(
于分光光度计5表示为A损伤.用蒸馏水
(取代
H2O37℃
,
1h.36nm波长下测得吸光度值
,1mL
)2(,,
测得吸光度值表示为A未损伤.用样品液
(取代蒸馏水
(
测得吸光度值表示为A样.1mL
)
1mL
)
1mL
)
(/(]羟基清除率=
[A样-A损伤)A未损伤-A损伤)
×100%.
A损伤
参比
:2mLPBS液+4mL蒸馏水
;A未损伤
参比
:2mLPBS液+4mL蒸馏水
;A样
参比
:1mL样品
液+2mLPBS液+3mL蒸馏水.
//液1m
蒸馏水
1mL
、
PBS液2mL
、
L与0.75mmolL硫酸亚铁溶液1mL
、
0.003molL的H2OL混匀
21m
/的研究方法并作少量修改来测定羟基自由基清除活性
:
将0.75mmolL的邻二氮菲溶
1.4数据分析)所有的数据用平均值±S并使用SE表示
,PSS
(
statistical
p
ackaeforthesocialscience20.0版软件进g
行方差分析.在进行方差分析前
,
用L结果采用单因素方差分析以及Devene进行方差齐性检测.uncan检测)进行统计学分析
,
检测结果之间是否有显著性差异
(P<0.05.
第1期郭春延等
:
荷叶蜡质层处理与荷梗品质及抗氧化性109
2结果
无打磨荷叶与荷梗的生物碱含量2.1打磨荷叶
、
无打磨荷叶的生物碱含量
(
质量分数
,
下同
)
比打磨荷叶的生物碱含量显著提高了3荷梗中的生0.0%.
)物碱含量与无打磨荷叶的生物碱含量无显著差异
(
图1.
无打磨荷叶与荷梗的类黄酮含量2.2打磨荷叶
、
)荷叶的类黄酮含量显著降低了9
图
24.8%
(
.
无打磨荷叶的类黄酮含量比打磨荷叶的类黄酮含量显著提高了5
荷梗中的类黄酮含量比无打磨
1.9%
,
),不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<0.05
图1打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的生物碱含量
,Fi.1Alkaloidcontentinthe
p
olishedlotusleavesthe
g
unolishedlotusleavesandthelotus
p
etioles
p
图中数据是5个重复的平均值±SE.
),不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<0.05
图2打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的类黄酮含量
,Fi.2Flavonecontentinthe
p
olishedlotusleavesthe
g
unolishedlotusleavesandthelotus
p
etioles
p
图中数据是5个重复的平均值±SE.
无打磨荷叶与荷梗的氨基酸含量2.3打磨荷叶
、
无打磨荷叶的氨基酸含量比打磨荷叶的氨基酸含量显著提高了2荷梗中的氨基酸含量比无打磨6.4%.
)荷叶的氨基酸含量显著降低了5
图
31.3%
(
.
无打磨荷叶与荷梗的可溶性糖含量2.4打磨荷叶
、
无打磨荷叶的可溶性糖含量比打磨荷叶的可溶性糖含量显著提高了1.荷梗中的可溶性糖含量比无9%.
)打磨荷叶的可溶性糖含量显著降低了6
图
40.4%
(
.
),不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<0.05
图3打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的氨基酸含量
,Fi.3Aminoacidcontentinthe
p
olishedlotusleavesthe
g
unolishedlotusleavesandthelotus
p
etiole
p
图中数据是5个重复的平均值±SE.
),不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<0.05
图4打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的可溶性糖含量
,Fi.4Solublesuarcontentinthe
p
olishedlotusleaves
gg
theunolishedlotusleavesandthelotus
p
etiole
p
图中数据是5个重复的平均值±SE.
110河北大学学报
(
自然科学版
)
第39卷
无打磨荷叶与荷梗的维生素C含量2.5打磨荷叶
、
打磨荷叶的维生素C含量比无打磨荷叶的维生素C含量显著提高了1荷梗中的维生素C含量比4.1%.
无打磨荷叶与荷梗的蛋白质含量2.6打磨荷叶
、
无打磨荷叶的蛋白质含量比打磨荷叶的蛋白质含量显著提高了8.荷梗中的蛋白质含量比无打磨荷2%.
)叶的蛋白质含量显著降低了8
图
68.2%
(
.
)无打磨荷叶的维生素C含量显著降低了8
图
51.7%
(
.
),不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<0.05
图5打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的维生素C含量
,Fi.5VitaminCcontentinthe
p
olishedlotusleavesthe
g
unolishedlotusleavesandthelotus
p
etioles
p
图中数据是5个重复的平均值±SE.
),不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<0.05
图6打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的蛋白质含量.
,Fi.6Proteincontentinthe
p
olishedlotusleavesthe
g
unolishedlotusleavesandthelotus
p
etioles
p
图中数据是5个重复的平均值±SE.
无打磨荷叶与荷梗的抗氧化性2.7打磨荷叶
、
打磨荷叶的D荷梗的PPH自由基清除活性比无打磨荷叶的DPPH自由基清除活性显著提高了18.6%.
)梗的超氧阴离子自由基清除活性比无打磨荷叶的超氧阴离子自由基清除活性显著提高了8
图
8.7%
(
.
)
图
7DPPH自由基清除活性比无打磨荷叶的DPPH自由基清除活性显著提高了88.3%
(
.
打磨荷叶的超氧阴离子自由基清除活性比无打磨荷叶的超氧阴离子自由基清除活性显著提高了3荷2.3%.
),不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<0.05
图7打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的
DPPH自由基清除活性
Fi.7DPPHradicalscaveninctivit
ggg
a
y
,inthe
p
olishedlotusleavestheunolished
p
lotusleavesandthelotus
p
etioles
图中数据是5个重复的平均值±SE.
),不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<0.05
图8打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的
超氧阴离子自由基清除活性
Fi.8Sueroxideradicalscaveninctivit
gpgg
a
y
,inthe
p
olishedlotusleavestheunolished
p
lotusleavesandthelotus
p
etioles
图中数据是5个重复的平均值±SE.
第1期郭春延等
:
荷叶蜡质层处理与荷梗品质及抗氧化性111
打磨荷叶的羟自由基清除活性比无打磨荷叶的羟自由基
清除活性显著提高了7荷梗的羟自由基清除活性比无打0.1%.
)磨荷叶的羟自由基清除活性显著提高了6
图
93.1%
(
.
3讨论
]
2
]
3,成分
[具有调脂降压
、
抑菌消炎的功效[
打磨荷叶的生物.
荷叶中富含生物碱
、
类黄酮
、
氨基酸和蛋白等活性和营养
碱
、
类黄酮
、
氨基酸
、
可溶性糖
、
蛋白等活性和营养成分
(
维生
素C除外
)
显著低于无打磨荷叶的活性和营养成分
,
原因可能
[
0
]
研究发Alcerito和Riedel等的研究结果相似.Alcerito等
2
现在短梗稠李
(的叶片表皮蜡质中Arrabidaeabrachoda)yp
[
1
]
含有黄酮类物质.研究证明在角质膜中发现少量Riedel等
2
)有2点
:荷叶中活性成分和营养成分存在于蜡质层上
,
这与
1不同字母表示处理之间具有显著性差异
(P<
图9打磨荷叶
、
无打磨荷叶与荷梗的羟
自由基清除活性
Fi.9Hdroxlradicalscaveninctivit
gyygg
a
y
,inthe
p
olishedlotusleavestheunolished
p
lotusleavesandthelotus
p
etioles
),
图中数据是
5个重复的平均值±S0.05E.
多糖
、
氨基酸等成分.所以黄酮
、
氨基酸
、
多糖等活性和营养成
分极有可能随着角质膜和蜡质层的缺失而下降.
也有可能
2
)
是在刀片打磨荷叶蜡质层的过程中
,
破坏了细胞壁
,
造成荷叶活性成分和营养成分含量的下降.因此
,
本研究
结果表明
:
荷叶蜡质层的缺失会降低荷叶活性和营养成分的含量
,
应保护好荷叶蜡质层不受破坏
,
才能获得
较高的荷叶品质.
能的物质.
]
22
荷梗的生物碱含量与无打磨荷叶中的生物碱含量无显著差异.段绪红等
[
在对荷梗生物碱提取分离的
化合物进行细胞毒活性实验中发现其对癌细胞具有明显的抑制作用.因此
,
荷梗生物碱是一种极具开发潜
[
3
]
超氧阴离子自由基可以再生其他活性氧DPPH自由基已广泛用于评估抗氧化剂的自由基清除活性
2.
]
24
]
25
]
2627
]
来引起组织损伤和各种疾病
[
羟自由基可以对大多数生物大分子造成严重的损害
[
黄芪
[
和金银花
[..
的茎具有较高的自由基清除活性.本研究表明
:
荷梗的自由基清除能力显著高于无打磨荷叶中自由基清除活
性.因此
,
荷梗表现出较强的抗氧化性
,
可用作功能性食品和制药工业的天然抗氧化剂.
28
]
,
荷叶含有较高的维生素C含量
(
维生素C具有较强的抗氧化性
)
这与邵建萍的研究结果类似.邵建萍等
[
打磨去除蜡质层后
,
荷叶的维生素C含量和抗氧化性显著提高
,
抗氧化性提高的原因可能是打磨后的
研究发现苹果刺伤处理明显提高总酚和类黄酮的含量
,
同时也提高了苹果提取物清除自由基的能力.至于打
磨后的荷叶中为何会有较高的维生素C含量尚不清楚
,
有待进一步研究.维生素C含量的提高可能是荷叶
应对外界伤害的一种自身保护机能.
4结论
本研究表明
,
荷叶蜡质层的破坏显著降低了荷叶活性成分和营养成分的含量
,
只有保护好蜡质层不受破
坏
,
才能获得较高的荷叶品质.打磨荷叶具有较高的抗氧化性.荷梗中的生物碱含量较高
,
同时抗氧化性也较
强.因此
,
荷梗具有重要开发潜能.
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